1．带上手套，将膜杯在60度洗脱缓冲中浸泡，至少1小时（可长）;膜杯上的透析膜有两种：MW3500和MW12000D。膜杯可重复利用5次左右，用完后在含0.05% NaN3的洗脱缓冲液中放冰箱保存（洗脱DNA的膜杯不建议反复使用，因DNA易吸附在膜上）
2．将过滤板塞到玻璃管底部（磨沙面），使其底部齐平，套上白色接头（硅胶）
3．将玻璃管插入洗脱模块，可将洗脱模块的环孔处打湿，玻璃管较易插入，确保玻璃管上缘与环孔齐平；将不用的环孔用灰色小帽盖上
4．将浸泡好的膜杯插入硅胶接头，在接头内装满洗脱液，用枪头反复吸取洗脱液以去除透析膜上的气泡
5．在玻璃管内装满洗脱液，将要洗脱的凝胶放入管内。为增加回收率，可放入多个凝胶条带，一般凝胶高度为1cm，如超过1cm，需增加洗脱时间
6．将整个洗脱模块放入洗脱槽，加入约600ml下槽缓冲液,缓冲液液面必须没过接头上缘,否则透析膜上容易产生气泡。在上槽加入约100ml缓冲液。
7．在洗脱槽内放入一搅拌子，洗脱过程中剧烈搅拌可防止气泡产生
8．盖上洗脱槽盖子，接电泳仪（Bio-Rad PowerPac1000/3000/Basic/Universal，红对红，黑对黑接入）
9．洗脱，每管设电流为8-10mA，蛋白洗脱一般3-5hr，DNA一般
15min-1hr 
10．洗脱完成后关闭电泳仪，打开盖子（如洗脱的是DNA，在关闭之前反转电极再洗脱1min以防止DNA沾在透析膜上）。取下灰色小帽，将上槽缓冲漏掉，或小心取出一个玻璃管，漏掉上槽缓冲
11．小心而快速地用枪头吸去玻璃管内的缓冲液至过滤板，确保在整个过程中过滤板下溶液没有被搅动
12．小心取下整个接头和膜杯，用一新枪头，将膜杯内的液体吸出，体积约为400ul，加入200ul新鲜缓冲液，清洗膜杯后收集吸出。洗脱的样品在这约600ul的溶液里，回收率蛋白可达80-100%，核酸70-90%。
常用蛋白洗脱缓冲液配方：
Tris base     3.0g     25mM 
Glycine       14.4g    192mM 
SDS            1.0g     0.1% 
         加水至1L(4度保存) 
常用DNA洗脱缓冲液配方：
                     (50x)     使用浓度
Tris                 242g       40mM 
冰醋酸               57.1ml      20mM 
0.5MEDTA(pH8.0)   100ml        1Mm 
SDS                   5g          0.1% 
                      加水至1L